การวินิจฉัยโรคเริม

การวินิจฉัยโรคเริมอาศัยการแยกไวรัสแบบคลาสสิกบนเซลล์เพาะเลี้ยงที่มีความอ่อนไหว วิธีอิมมูโนฟลูออเรสเซนซ์และซีรั่ม การตรวจด้วยกล้องช่องคลอด และการใช้เทคนิคทางชีววิทยาโมเลกุลสมัยใหม่ (PCR, dot hybridization) ซึ่งช่วยให้สามารถวินิจฉัยไวรัสเริมได้ทั้งหมด รวมถึงไวรัสชนิด HHV-6 และ HHV-7

วิธีการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการสำหรับการติดเชื้อเริม

วิธีการหลักที่มุ่งเน้นการแยก HSV หรือตรวจจับอนุภาคไวรัสและ/หรือส่วนประกอบของไวรัส	วิธีการเสริมที่มุ่งเป้าไปที่การตรวจจับแอนติบอดีต่อ HSV ในของเหลวทางชีวภาพของร่างกายมนุษย์
การแยก HSV ในเซลล์และวัฒนธรรมสัตว์ที่มีความอ่อนไหว กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบตรงและแบบภูมิคุ้มกัน รูปแบบตรงและทางอ้อมของ IPA ที่ปรึกษาทางการเงิน วิธีการทางชีววิทยาโมเลกุล ปฏิกิริยาการเกาะกลุ่มของน้ำยาง	ปฏิกิริยาการทำให้เป็นกลาง อาร์เอสซี การตรวจสอบแอนติบอดีต่อโปรตีนที่ไม่ใช่โครงสร้างของ HSV-1,2

จากการศึกษาพบว่าผู้ป่วยร้อยละ 76 เป็นโรคเริมที่อวัยวะเพศ (GH) ที่เกิดจาก HSV-2 และร้อยละ 24 เป็นโรคเริมชนิด HSV-1 นอกจากนี้ GH ซึ่งเป็นการติดเชื้อเดี่ยวเกิดขึ้นในผู้ป่วยเพียงร้อยละ 22 และพบความสัมพันธ์ของจุลินทรีย์ในร้อยละ 78 ของผู้ป่วย ในผู้ป่วยร้อยละ 46 ร้อยละ 40 ของผู้ป่วยพบการติดเชื้อปรสิตที่เกิดจากเชื้อก่อโรค 2 ชนิด ได้แก่ เชื้อคลาไมเดีย เชื้อการ์ดเนอร์เรลลา เชื้อไตรโคโมนาส และเชื้อโกโนค็อกคัสในสเมียร์พบได้น้อยกว่า

ในผู้ป่วยร้อยละ 27 การติดเชื้อปรสิตมีสาเหตุมาจากเชื้อก่อโรค 3 ชนิด ส่วนร้อยละ 5.2 มีเชื้อก่อโรค 4 ชนิด นอกจากนี้ ยังพบการติดเชื้อคลามีเดียร่วมกับการ์ดเนอร์เรลลาและเชื้อราแคนดิดาบ่อยที่สุด ข้อมูลเหล่านี้สนับสนุนความจำเป็นในการตรวจทางแบคทีเรียวิทยาอย่างละเอียดในผู้ป่วยที่เป็น GH เพื่อระบุกลุ่มของเชื้อก่อโรค รวมถึงการศึกษาเชิงลึกเกี่ยวกับการเกิดโรคของการติดเชื้อร่วมของทางเดินปัสสาวะและอวัยวะสืบพันธุ์ ซึ่งจะช่วยให้สามารถแยกความแตกต่างระหว่างการบำบัดการติดเชื้อเริมที่ซับซ้อนได้

วัสดุที่ศึกษาวิจัยเพื่อแยก HSV โดยอาศัยตำแหน่งของรอยโรคเริม

การระบุตำแหน่ง ของรอยโรค	เนื้อหาของถุงน้ำ	การขูดเซลล์				ซีเอสเอฟ	สำลักหลอดลม	การตรวจชิ้นเนื้อ	เลือด
		1	2	3	4
หนัง	-								-
ดวงตา			-						-
อวัยวะเพศ				-					-
ทวารหนัก	-				-				-
ปาก	-	-							-
ระบบประสาทส่วนกลาง	-					-		-	-
ปอด		-					-		-
ตับ								-	-
โรคเริมแต่กำเนิด	-	-	-				-		-

วิธีการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการของการติดเชื้อไซโตเมกะโลไวรัส

วิธีการ	เวลาที่ใช้ในการรับผลลัพธ์	หมายเหตุ
ไวรัสวิทยา
กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน	3 ชั่วโมง	ไม่ค่อยเข้าถึงได้
การแยกไวรัสในเซลล์เพาะเลี้ยง (VCI)	4-20 วัน	มาตรฐาน, ช้า
การย้อมอิมมูโนฟลูออเรสเซนต์ของ AG ระยะเริ่มต้นโดยใช้แอนติบอดีโมโนโคลนัล	6 ชั่วโมง	เจาะจงน้อยลง
ไซโตโลยี	2-3 ชั่วโมง	เจาะจงน้อยลง
การตรวจทางเซรุ่มวิทยา
อาร์เอสซี	2 วัน	มาตรฐาน
อาร์จีเอ	1 วัน	ต้องใช้แรงงานมาก
แนวปะการัง	6 ชั่วโมง	เรียบง่าย เฉพาะเจาะจง
กองทุนเพื่อเด็กพิการ	6 ชั่วโมง	ยาก
ริมป์	6 ชั่วโมง	ยาก
อีไลซ่า (IgM, DO)	6 ชั่วโมง	รวดเร็ว ง่ายดาย
อิมมูโนบล็อต	6 ชั่วโมง	แพง
ชีววิทยาโมเลกุล
เอ็มจี	5-7 วัน	ราคาแพง ต้องใช้แรงงานมาก
พีซีอาร์	3 ชั่วโมง	แพง

วิธีการวินิจฉัยโรคไวรัสเริมงูสวัด

วิธีการวินิจฉัย	เทคนิคห้องปฏิบัติการ
ทางอ้อม
การเลือก	การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ ตัวอ่อนไก่ สัตว์ทดลอง การเพาะเลี้ยงร่วมกับเซลล์ที่อนุญาตหรือไวรัสตัวช่วย
การระบุตัวตนของเชื้อแยก	ปฏิกิริยาการทำให้เป็นกลาง, RSC, IF, PIEF, ปฏิกิริยาการตกตะกอนของเชื้อแยก, การเกาะกลุ่ม, IF
โดยตรง
เซลล์วิทยา	สเมียร์: สีอิมมูโนฟลูออเรสเซนซ์
เนื้อเยื่อวิทยา	พยาธิสรีรวิทยาของเซลล์
โครงสร้าง	กล้องจุลทรรศน์เอ็มบริโอ, กล้องจุลทรรศน์อิมมูโนอิเล็กตรอน
การตรวจสอบแอนติเจน	ถ้า, PIEF, RIM, IFA
การกำหนดปริมาณการผลิตแอนติบอดีในท้องถิ่น	Ig M, Ig G, Ig A: ELISA, RIA
แนวทางชีววิทยาโมเลกุล	การผสมพันธุ์โมเลกุล, PCR

การวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการของการติดเชื้อที่เกิดจากไวรัสเริมงูสวัด

ปัญหาการวินิจฉัย	วิธีการ	ผลลัพธ์ที่คาดหวัง
การติดเชื้อเฉียบพลันขั้นต้น	1	ตรวจจับได้ภายใน 2 ชั่วโมง
	2	ระดับแอนติบอดีกำลังเพิ่มขึ้นช้าๆ
	3	ปัจจุบันพบหลังจากติดเชื้อ 3 วัน
การติดเชื้อ ซ้ำแบบเฉียบพลัน	1	ตรวจพบ UUU หลัง 2 ชั่วโมง
	2	ระดับแอนติบอดีกำลังเพิ่มขึ้นช้าๆ
	4	ปรากฏหลังจากมีผื่นขึ้น 4 วัน

1. การกำหนดปริมาณของเวสิเคิลของ VEGF ในของเหลว
2. ซีโรโลยี: CSC, ELISA, มุ่งเป้าไปที่การตรวจจับ
3. ซีรั่มวิทยา: ELISA มุ่งเป้าไปที่การตรวจหา IgM
4. เซรุ่มวิทยา: ELISA มุ่งเน้นการตรวจหา IgA, IgM

วิธีการบ่งชี้การตอบสนองภูมิคุ้มกันต่อการติดเชื้อไวรัสเริมงูสวัด

เข้าใกล้	วิธี
การตรวจพบการเพิ่มขึ้นของไทเตอร์แอนติบอดีในซีรัมที่สอง	RSK, RTGA, RPGA, ปฏิกิริยาการทำให้เป็นกลาง IF, RIM, ELISA
การตรวจหาแอนติบอดีจำเพาะคลาส Ig G และ Ig A ในตัวอย่างซีรั่มตัวแรก	ELISA, IF, RIM, การเกาะกลุ่มลาเท็กซ์

การแปลผลการตรวจทางซีรัมวิทยาในซีรัมของผู้ป่วยเพื่อหาการติดเชื้อไวรัสเริม (ELISA)

ชื่อ โรคติดเชื้อ/เครื่องหมาย	ค่าเฉลี่ยเกณฑ์การติดเชื้อ
	ผลการวิเคราะห์	การตีความ
ไซโตเมกาลี แอนตี้-CMV IgG (1-20 U/มล.) แอนตี้-CMV IgM (100-300%)	บวก 1-6 บวก 6-10 บวก >10 ลบ บวก 100-300 ลบ <90 สงสัย 90-100	การบรรเทา อาการ การกำเริบของโรค ระยะเฉียบพลันของโรค ไม่มีการติดเชื้อ (โรค) ระยะเฉียบพลันของโรค ตรวจวิเคราะห์ซ้ำอีกครั้งใน 2-3 สัปดาห์
ไวรัสเริมชนิด 1,2 ซีโรไทป์ Anti-HSV 1/2 ทั้งหมด (100-900%)	บวก 100-400 บวก 400-800 บวก >800 ลบ <100	อาการสงบ อาการกำเริบของโรค ระยะเฉียบพลันของโรค ไม่มีการติดเชื้อ (โรค)

ตารางแสดงวิธีการหลักในการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการของการติดเชื้อไวรัสเริม รวมถึงวัสดุทางชีวภาพที่แนะนำที่ตรวจสอบเมื่อแยก HSV โดยคำนึงถึงตำแหน่งของรอยโรคจากไวรัสเริม

การแยกเชื้อไวรัสเริมและไวรัส CMV ได้อย่างน่าเชื่อถือโดยการติดเชื้อในเซลล์เพาะเลี้ยงที่ไวต่อเชื้อ ดังนั้น ในระหว่างการตรวจไวรัสวิทยาของผู้ป่วย 26 รายในช่วงที่กลับมาเป็นซ้ำ พบว่า HSV ถูกแยกได้ในเซลล์เพาะเลี้ยง Vero ที่ไวต่อเชื้อใน 23 ราย (88.4%) เซลล์เพาะเลี้ยงที่ติดเชื้อแสดงให้เห็นภาพการทำงานของเซลล์แบบไซโทพาธีซึ่งมีลักษณะเฉพาะของ HSV ได้แก่ การก่อตัวของเซลล์ยักษ์ที่มีนิวเคลียสหลายเซลล์หรือการสะสมของเซลล์ที่กลมและขยายใหญ่ขึ้นในรูปแบบคลัสเตอร์ ใน 52.1% ของกรณี สามารถตรวจพบจุดโฟกัสของการทำงานของเซลล์แบบไซโทพาธีของไวรัสได้ภายใน 16-24 ชั่วโมงหลังจากการติดเชื้อ เมื่อฟักเชื้อเพาะเลี้ยงที่ติดเชื้อเป็นเวลา 48-72 ชั่วโมง เปอร์เซ็นต์ของสารที่ก่อให้เกิดการทำลายเซลล์เฉพาะเจาะจงเพิ่มขึ้นเป็น 87% และมีเพียง 13% ของกรณีเท่านั้นที่ตรวจพบผลบวกภายใน 96 ชั่วโมงหลังจากการติดเชื้อหรือมากกว่านั้นหรือระหว่างการแพร่เชื้อซ้ำ

วิธีการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการของการติดเชื้อเริมแบบทั่วไป

วิธีการหลักที่มุ่งเน้นการตรวจจับ (แยก) ไวรัสเริม อนุภาค และส่วนประกอบของไวรัส	วิธีการเสริมที่มุ่งเป้าไปที่การตรวจจับแอนติบอดีต่อไวรัสเริมในของเหลวในร่างกาย การตรวจจับการเปลี่ยนแปลงของเอนไซม์ในซีรั่มเลือด
การแยกไวรัสเริมบนเซลล์และวัฒนธรรมสัตว์ที่อ่อนไหว กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบตรงและแบบภูมิคุ้มกัน รูปแบบตรงและแบบอ้อมของวิธี immunoperoxidase รูปแบบตรงและแบบอ้อมของวิธีแอนติบอดีเรืองแสง รูปแบบต่างๆ ของเอนไซม์อิมมูโนแอสเซย์ แบบเฟสแข็ง รูปแบบต่างๆ ของวิธีการไฮบริดิเซชันระดับโมเลกุล (ดีเอ็นเอ-ดีเอ็นเอ) ปฏิกิริยาลูกโซ่โพลีเมอเรส ปฏิกิริยา การเกาะกลุ่มลาเท็กซ์	การทดสอบการทำให้ เป็นกลาง การทดสอบการ ตรึงคอมพลีเมนต์ การทดสอบการเกาะกลุ่ม ลาเท็กซ์ วิธี แอนติบอดีเรืองแสงแบบทางอ้อม วิธี อิมมูโนเปอร์ออกซิเดสแบบทางอ้อม เอนไซม์เฟสแข็งแบบต่างๆ ของอิม มูโนแอสเซย์ วิธีการบล็อต ภูมิคุ้มกัน วิธีการตรึงคอมพลีเมนต์แบบรัศมี การกำหนดระดับอะลานีนและแอสปาร์เทตอะมิโนทรานสเฟอเรส

วิธีทางซีรั่มวิทยาใช้ในการวินิจฉัยโรคติดเชื้อโมโนนิวคลีโอซิส (การติดเชื้อที่เกิดจากไวรัส EBV) ปฏิกิริยาของพอล-บันเนลล์กับเม็ดเลือดแดงแกะ ค่าไทเตอร์ในการวินิจฉัย 1:28 ขึ้นไปในการทดสอบซีรั่มเลือดเดียว หรือแอนติบอดีเพิ่มขึ้น 4 เท่าเมื่อตรวจซีรั่มคู่ ปฏิกิริยาของฮอฟฟ์-บาวเออร์กับเม็ดเลือดแดงม้าที่ผ่านการฟอร์มาลิน 4% จะถูกนำมาใช้ ผลลัพธ์จะถูกนำมาพิจารณาหลังจาก 2 นาที ในโรคติดเชื้อโมโนนิวคลีโอซิส ปฏิกิริยาจะมีความเฉพาะเจาะจงสูง

ปัจจุบันมีการพัฒนาวิธีเอนไซม์อิมมูโนแอสเซย์ (EIA) สำหรับการวินิจฉัยโรคโมโนนิวคลีโอซิสที่ติดเชื้อ ในกรณีนี้ แอนติบอดี IgG และ IgM ในซีรั่มของผู้ป่วยจะถูกกำหนดโดยฟักตัวกับลิมโฟบลาสต์ที่ติดเชื้อ EBV ตามด้วยการรักษาด้วยแอนติบอดีเรืองแสง ในระยะเฉียบพลันของโรค แอนติบอดีต่อแอนติเจนแคปซิดของไวรัสจะถูกกำหนดด้วยไทเตอร์ 1:160 ขึ้นไป

เมื่อใช้ระบบทดสอบเชิงพาณิชย์นำเข้าจำนวนหนึ่ง ELISA สามารถตรวจจับ: แอนติบอดีต่อแอนติบอดีซองหุ้มของไวรัส EBV แอนติบอดีต่อแอนติเจน EBV ระยะเริ่มต้น แอนติบอดีทั้งหมดต่อแอนติเจน EBV ระยะเริ่มต้น ซึ่งกำหนดได้ในระยะเฉียบพลันของโรคทั้งในนิวเคลียสและในไซโทพลาซึมของเซลล์ และแอนติบอดีต่อ EBV ระยะเริ่มต้นที่จำกัด ซึ่งกำหนดได้ในระยะเฉียบพลันของโรคทั้งในนิวเคลียสและในไซโทพลาซึมของเซลล์ แอนติบอดีต่อแอนติเจน EBV ระยะเริ่มต้นที่จำกัด ซึ่งกำหนดได้เฉพาะในไซโทพลาซึมของเซลล์เท่านั้น และแอนติบอดีต่อแอนติเจนนิวเคลียร์ของ EBV การใช้ระบบทดสอบเหล่านี้ช่วยให้สามารถวินิจฉัยโรคต่างๆ ที่เกี่ยวข้องกับไวรัส EBV ได้หลากหลายโรค

หลังจากการทดสอบ ELISA ให้ผลเป็นบวกซึ่งเผยให้เห็นแอนติบอดีต่อ EBV จะทำปฏิกิริยา immunoblotting ยืนยันซึ่งจะตรวจสอบการมีอยู่ของแอนติบอดีต่อโปรตีนมาร์กเกอร์ EBV แต่ละตัว (โปรตีน p): p23, p54, p72 (การมีอยู่ของโปรตีนนี้บ่งชี้ถึงความเป็นไปได้ของการแพร่พันธุ์ของ EBV) หน้า 138 วิธีการทางห้องปฏิบัติการดังกล่าวข้างต้นยังใช้ในการติดตามประสิทธิผลของการรักษาอีกด้วย

ความไวของวิธีไวรัสวิทยาอยู่ที่ 85-100% ความจำเพาะอยู่ที่ 100% ระยะเวลาการศึกษาอยู่ที่ 2-5 วัน วิธีการอิมมูโนฟลูออเรสเซนต์โดยตรง (DIF) โดยใช้แอนติบอดีโพลีโคลนัลหรือโมโนโคลนัลต่อ HSV-1 และ HSV-2 มักใช้ในงานปฏิบัติ วิธี DIF สามารถทำซ้ำได้ค่อนข้างง่ายในห้องปฏิบัติการทางคลินิกทั่วไป ไม่แพง ความไวสูงกว่า 80% ความจำเพาะอยู่ที่ 90-95% กล้องจุลทรรศน์อิมมูโนฟลูออเรสเซนต์เผยให้เห็นการมีอยู่ของสิ่งเจือปนในไซโทพลาสซึม ลักษณะทางสัณฐานวิทยา เปอร์เซ็นต์ของเซลล์ที่ติดเชื้อในสเมียร์-การขูดจากท่อปัสสาวะ ช่องปากมดลูก ปากมดลูก ทวารหนัก

วิธี PIF จะให้แนวคิดเกี่ยวกับคุณสมบัติทางสัณฐานวิทยาของเซลล์และการเปลี่ยนแปลงในตำแหน่งของแอนติเจน HSV นอกจากสัญญาณโดยตรงของความเสียหายของเซลล์จากไวรัสเริม (การตรวจจับการเรืองแสงเฉพาะ) แล้ว ยังมีสัญญาณทางอ้อมของการติดเชื้อเริมตามข้อมูล PIF:

• การรวมตัวของสสารนิวเคลียร์ การแยกตัวของคาริโอเล็มมา
• การมีอยู่ของสิ่งที่เรียกว่านิวเคลียส "หลุม" เมื่อมีแคริโอเล็มมาเพียงอันเดียวที่เหลืออยู่จากนิวเคลียสเซลล์
• การมีอยู่ของสิ่งที่รวมอยู่ในนิวเคลียส - Cowdry bodies

เมื่อทำ PIF แพทย์จะได้รับการประเมินทั้งเชิงคุณภาพและเชิงปริมาณเกี่ยวกับสถานะของเซลล์ที่ติดเชื้อ ซึ่งเราใช้ในการประเมินประสิทธิผลของการบำบัดด้วยยาต้านไวรัสด้วยอะไซโคลเวียร์ (AC) ดังนั้น ผู้ป่วยโรคเริมที่อวัยวะเพศธรรมดา (GH) จำนวน 80 รายจึงได้รับการตรวจโดยใช้เทคนิค PIF ในเชิงพลวัต ผลปรากฏว่าหากผู้ป่วย 88% มีเปอร์เซ็นต์เซลล์ที่ติดเชื้อสูง (50-75% ขึ้นไป) ในสเมียร์ก่อนการรักษาด้วยอะไซโคลเวียร์ จากนั้นหลังจากใช้อะไซโคลเวียร์ 1 รอบ ผู้ป่วย 44% จะตรวจพบเซลล์ปกติในสเมียร์ ใน 31% ของผู้ป่วย พบเซลล์ที่ติดเชื้อเพียงเซลล์เดียว และในผู้ป่วย 25% พบเซลล์ที่ติดเชื้อมากถึง 10%

ปริมาณเซลล์ที่ติดเชื้อในสเมียร์ (ปฏิกิริยา PIF) ของผู้ป่วยโรคเริมที่อวัยวะเพศที่ได้รับการรักษาด้วยอะไซโคลเวียร์

ช่วงเวลาของการเจ็บป่วย	เปอร์เซ็นต์เนื้อหาในสเมียร์
	เซลล์ที่ติดเชื้อ					เซลล์ปกติ
	มากกว่า 75%	50-75%	40-50%	10%	เซลล์เดี่ยวในมุมมอง
อาการกำเริบ (ก่อนการรักษา)	25%	63%	12%
	(20)	(50)	(10)
การบรรเทาอาการ (หลังการรักษา)				25%	31%	44%
				(20)	(25)	(35)

จากการใช้ PIF และวิธีการ dot hybridization เป็นเวลาหลายปี พบว่าผลการศึกษามีความสอดคล้องกันเกือบ 100% ของกรณี ควรสังเกตว่าเพื่อเพิ่มความน่าเชื่อถือในการวินิจฉัยโรคเริม โดยเฉพาะในกรณีของโรคเริมที่ไม่มีอาการหรือมีอาการไม่ชัดเจน แนะนำให้ใช้วิธีการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการ 2-3 วิธีในการทำงาน โดยเฉพาะเมื่อตรวจสตรีมีครรภ์ สตรีที่มีประวัติการคลอดบุตรไม่ดี และผู้ที่มีการวินิจฉัยทางนรีเวชที่ไม่ชัดเจน

ดังนั้นในการวินิจฉัยการติดเชื้อไวรัสและแบคทีเรียของทางเดินปัสสาวะและอวัยวะสืบพันธุ์ด้วย PCR จำเป็นต้องประเมินผลบวกที่ได้ โดยคำนึงถึงประวัติการมีอยู่ (หรือไม่มีอยู่) ของอาการทางคลินิกที่เฉพาะเจาะจงของโรค หากตรวจพบเชื้อคลามีเดียโดยใช้ PCR ในกรณีนี้ มีโอกาสติดเชื้อสูง และสามารถแก้ไขปัญหาของการบำบัดได้ตามนั้น ในกรณีที่ตรวจพบไมโคพลาสมา (ยูเรียพลาสมา) ซึ่งเป็นจุลินทรีย์ที่ฉวยโอกาส จำเป็นต้องมีการศึกษาทางวัฒนธรรมเพิ่มเติมเพื่อยืนยันการวินิจฉัย กล่าวคือ การเพาะเชื้อจากผู้ป่วยลงในเซลล์เพาะเลี้ยงที่มีความอ่อนไหว เฉพาะเมื่อได้ผลบวกจากการวิเคราะห์ทางวัฒนธรรมเท่านั้น จึงจะยืนยันการวินิจฉัยโรคไมโคพลาสโมซิสในห้องปฏิบัติการได้ วิธีเดียวกันนี้จะช่วยให้ระบุความไวของไมโคพลาสมาแยกตัวต่อรูปแบบยาที่ใช้บ่อย (ยาปฏิชีวนะ ฟลูออโรควิโนโลน เป็นต้น) ได้หากจำเป็น

การติดเชื้อพร้อมกันกับไวรัสหลายชนิดในตระกูล Herpesviridae เป็นไปได้ เราตรวจพบการติดเชื้อของผู้ป่วยรายหนึ่งด้วยไวรัส HSV-1, HSV-2 และ CMV บ่อยครั้ง ผู้ป่วยที่มีอาการทางคลินิกและทางห้องปฏิบัติการของ IDS รอง (ผู้ป่วยที่เป็นมะเร็งเม็ดเลือด ผู้ป่วยมะเร็ง และผู้ป่วยติดเชื้อ HIV) มักติดเชื้อไวรัสเริมหลายชนิดมากกว่าอย่างมีนัยสำคัญ ดังนั้น จึงแสดงให้เห็นว่าความผิดปกติทางคลินิกและภูมิคุ้มกันที่ลุกลามในการติดเชื้อ HIV มักมาพร้อมกับจำนวนไวรัสเริมที่ตรวจพบโดยวิธีไฮบริดไดเซชันโมเลกุลที่เพิ่มขึ้น ในกรณีนี้ การตรวจหา DNA ชนิด HSV-1, CMV และ HHV-6 พร้อมกันอย่างซับซ้อนถือเป็นวิธีที่มีนัยสำคัญทางพยากรณ์โรคสูงสุด

[ 1 ], [ 2 ], [ 3 ]